Staphylocoques et Streptocoques

Introduction aux Staphylocoques et Streptocoques

Les staphylocoques et les streptocoques sont deux genres de bactéries Gram‑positives qui occupent une place centrale en médecine générale et en pathologie infectieuse. Bien que leurs morphologies (amas vs chaînes) et leurs profils biochimiques diffèrent, ils sont souvent confondus lors d’une première évaluation clinique. Cette leçon détaillée vous permettra de maîtriser les critères de différenciation, les milieux de culture, les facteurs de virulence et les options thérapeutiques recommandées.

1. Morphologie et critères biochimiques de base

1.1. Staphylocoques

Les staphylocoques apparaissent en amas (grappe de raisins) au microscope. Les deux tests biochimiques les plus utilisés sont :

• Test de catalase : positif pour tous les staphylocoques, permettant de les séparer des streptocoques (catalase négatif).
• Test de coagulase : différencie Staphylococcus aureus (coagulase positive) des espèces coagulase négative comme S. epidermidis.

Le test de coagulase lié (clumping factor) avec du plasma de lapin est le plus rapide pour identifier S. aureus sur une lame.

1.2. Streptocoques

Les streptocoques se présentent en chaînes ou paires. Leur caractéristique déterminante est la catalase négative, ce qui les sépare clairement des staphylocoques. D’autres tests, comme la sensibilité au NaCl ou la capacité à fermenter le lactose, aident à préciser le groupe de Lancefield.

2. Milieux sélectifs et différenciation en laboratoire

Le laboratoire microbiologique utilise des milieux sélectifs pour isoler rapidement les espèces pathogènes.

2.1. Milieu de Chapman (Mannitol Salt Agar)

Ce milieu contient du mannitol et du NaCl 7,5 %. Le mannitol est fermenté par S. aureus, ce qui entraîne une hausse du pH et un changement de couleur du tampon indicateur (généralement du rouge au jaune). Les staphylocoques coagulase négative ne fermentent pas le mannitol et restent rouges.

2.2. Autres milieux

• Milieu de MacConkey : sélectif pour les Gram‑négatifs, donc non pertinent pour staphylocoques/streptocoques.
• Milieu de Mueller‑Hinton : utilisé pour les tests de sensibilité aux antibiotiques, pas pour la différenciation initiale.
• Milieu de Bile‑Esculine : sélectif pour Enterococcus, pas pour les staphylocoques.

3. Facteurs de virulence majeurs

3.1. Staphylococcus aureus

Parmi les nombreuses toxines produites, la TSST‑1 (toxine du choc toxique) est responsable du syndrome de choc toxique staphylococcique. D’autres facteurs, comme l’α‑hémolysine et les exfoliatines, contribuent à des infections cutanées ou à des syndrome de desquamation.

3.2. Streptocoques du groupe B

Le groupe B (Streptococcus agalactiae) possède une capsule polysaccharidique qui le rend hautement virulent chez le nouveau‑né. Il est identifié par son groupe de Lancefield (Groupe B).

4. Tests rapides d’agglutination et confirmation

Pour confirmer la présence de coagulase libre chez S. aureus, on utilise le test en tube avec incubation de 4 à 24 h. Ce test détecte la formation de caillots dans le plasma de lapin, confirmant la production de coagulase.

Un autre test d’agglutination, le clumping factor sur lame, fournit un résultat en quelques minutes, idéal pour les laboratoires à haut débit.

5. Traitement antibiotique des infections à Staphylococcus aureus

5.1. Première ligne

Lorsque le S. aureus est sensible aux β‑lactamines, l’oxacilline est le traitement de référence. Cette pénicilline semi‑synthétique résiste aux β‑lactamases produites par la bactérie, assurant une action bactériostatique efficace.

Question de réflexion : En cas de résistance à l’oxacilline (SARM), quel antibiotique de deuxième ligne choisiriez‑vous ?
a) Vancomycine
b) Céphalosporine de troisième génération
c) Rifampicine

5.2. Alternatives en cas de résistance

• Vancomycine : glycopeptide de choix pour les SARM (Staphylococcus aureus résistant à la méthicilline).
• Linézolide : option orale ou intraveineuse pour les infections cutanées compliquées.
• Association oxacilline + rifampicine : parfois utilisée en cas de persistance ou de biofilm.

6. Identification des espèces coagulase négative

Dans le contexte d’une infection cutanée purulente après une plaie profonde, la découverte d’un cocci Gram+ en amas, catalase+, coagulase négative pointe vers Staphylococcus epidermidis. Cette espèce fait partie de la flore cutanée normale mais peut devenir pathogène lorsqu’elle colonise des dispositifs médicaux ou des plaies profondes.

7. Streptocoques : groupes de Lancefield et infections néonatales

Les streptocoques sont classés selon leurs antigènes de surface (groupes de Lancefield). Le groupe B (S. agalactiae) est le principal responsable des infections néonatales, telles que la méningite, la pneumonie et la septicémie. Le diagnostic repose sur la culture du prélèvement vaginal ou rectal de la mère et la mise en place d’une prophylaxie intrapartum.

8. Synthèse et tableau récapitulatif

Ce tableau vous aide à visualiser rapidement les différences essentielles entre ces deux genres, facilitant le diagnostic et le choix thérapeutique.

9. Questions d’auto‑évaluation

1. Quel test biochimique permet de différencier rapidement S. aureus des autres staphylocoques sur une lame ?
   Réponse : Test de coagulase liée (clumping factor) avec plasma de lapin.
2. Quel milieu sélectif contient du mannitol et un indicateur de pH pour différencier S. aureus des staphylocoques coagulase négative ?
   Réponse : Milieu de Chapman.
3. Quel facteur de virulence de S. aureus est responsable du choc toxique staphylococcique (TSST) ?
   Réponse : TSST‑1.
4. Quel antibiotique est indiqué en première ligne contre une infection à S. aureus sensible aux β‑lactamines ?
   Réponse : Oxacilline.
5. Quelle caractéristique biochimique distingue les streptocoques des staphylocoques ?
   Réponse : Catalase négatif chez les streptocoques.
6. Quel groupe de Lancefield regroupe les streptocoques responsables d’infections du nouveau‑néveau ?
   Réponse : Groupe B.

Révisez ces questions régulièrement pour consolider vos connaissances et être prêt(e) à les appliquer en pratique clinique.